1) 小心肠在 SDS 凝胶泳道上加一组按量递增为序的蛋白质样品，再按相同次序加一组纯蛋白质样品作为定量的规范。按惯例进行电泳（见附录 5)。

  2) 从电泳装置取下凝胶，置于脱色液中漂洗 1 min 以脱去部分 SDS，再将它浸泡在 CBB 染色液中，于 20°C 缓慢摇摆（如在脱色摇床上）。0.75-mm 厚的凝胶需浸泡 lh,1.5-mm 厚的凝胶约需 4 h。

  3) 倾出 CBB 染色液，将凝胶浸泡在脱色液中，缓慢摇摆1~4 h, 视凝胶厚度而定 (用海绵或 Kimwipe 纸巾吸收游离的染料)。当大部分染料由凝胶扩散出来后, 从容器中取出吸收物，于脱色液中参加 CBB 染色液，使其 A650nm值达 0.1(浅蓝色)。其时，CBB 的浓度大于它与蛋白质的均匀结合系数。凝胶置于此稀染色液中平衡过夜，并保存于其间直至扫描测定。

  4) 在 650nm 波长下，扫描经染色和脱色的凝胶，测定各蛋白带中结合染料的量。

  5) 对每条带，以结合染料量对其加样量作图，比较所得直线与规范曲线的斜率, 核算各样品中意图蛋白的浓度。

  6) 对原材料或纯化各步祥品的凝胶扫描全程进行积分，核算σ32带中的蛋白质占总蛋白量的份额。